WO2013054005A1 - Procede de production de cellulases en continu par un champignon filamenteux utilisant un substrat carbone issu d'un pretraitement acide - Google Patents

Procede de production de cellulases en continu par un champignon filamenteux utilisant un substrat carbone issu d'un pretraitement acide Download PDF

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WO2013054005A1
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substrate
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carbon substrate
inducing
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Fadhel Ben Chaabane
Bernard Chaussepied
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IFP Energies Nouvelles
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Definitions

  • the present invention relates to the production of cellulases and hemicellulases, particularly in the context of the production of ethanol from lignocellulosic materials.
  • the present invention relates to a process for producing cellulase continuously from a filamentous fungus.
  • Ligno-cellulosic biomass is characterized by a complex structure consisting of three main fractions: cellulose, hemicelluloses and lignins.
  • the ethanol conversion process comprises several steps. Pretreatment makes the cellulose accessible to enzymes that are cellulases.
  • the enzymatic hydrolysis step allows the transformation of the cellulose into glucose which is then converted into ethanol during the fermentation step by, in general, the yeast Saccharomyces cerevisiae.
  • the distillation step will make it possible to separate and recover ethanol from the fermentation must.
  • the various techno-economic studies show that the reduction of the cost of cellulases is one of the key points of organic ethanol production processes using lignocellulosic raw materials.
  • industrial cellulases are mainly produced by a filamentous fungus, Trichoderma reesei, because of its high secretory power.
  • Trichoderma reesei is the most used microorganism for the production of cellulases. Wild strains have the ability to excrete, in the presence of an inducing substrate, cellulose, for example, the enzyme cocktail considered best suited to the hydrolysis of cellulose.
  • the enzymatic cocktail enzymes contain three main types of activities: endoglucanases, exoglucanases and cellobiases. Other proteins possessing properties essential to hydrolysis of lignocellulosic materials are also produced by Trichoderma reesei, xylanases for example.
  • the presence of an inducing substrate is essential for the expression of cellulolytic and / or hemicellulolytic enzymes.
  • cellulase genes on different carbon sources has been studied in detail. They are induced in the presence of cellulose, its hydrolysis products (for example: cellobiose) or certain oligosaccharides such as lactose or sophorose (11 May et al., 1997, Appl Environ Microbiol 63: 1298-1306).
  • the cellulase production process by Trichoderma reesei has been significantly improved for extrapolation on an industrial scale.
  • the strategy that is applied industrially is to make a rapid growth of the fungus to a given concentration in a step called growth phase of said fungus, then to induce the production of cellulases from said fungus to maximize productivity and yield in a stage called phase and production.
  • Said growth phase is generally carried out in a closed reactor, that is to say in "batch” mode according to the Anglo-Saxon terminology.
  • Said production phase is generally carried out in a continuous feed reactor during which no withdrawal of the contents of the reactor is carried out, that is to say in "fed batch” mode according to the Anglo-Saxon terminology.
  • FR-B-2 881 753 describes a process for producing cellulases comprising two steps:
  • the supply of soluble carbonaceous substrate is carried out continuously, at an optimum applied specific rate, expressed in mg of substrate per gram of dry weight of filamentous mushroom and per hour, of between 35 and 45 mg.g -1 .h -1 .
  • the protein production step is not implemented beyond about 170 hours.
  • This protocol makes it possible to achieve a protein concentration of the order of 35 to 40 g / L with a productivity of the order of 0.2 gL -1 .h -1 .
  • the reactor must be cleaned and a new seeding line must be made.
  • the disadvantage of this procedure is a low productivity which increases the initial investment in number of enzyme production fermenters.
  • the protein concentration obtained is also low and often requires a concentration step after filtration of the mycellium. All this contributes to making the second generation ethanol production process uncompetitive.
  • An object of the present invention is to provide a method for producing cellulases and hemicellulases using at least one specific inducing carbon substrate derived from acid pretreatment of a lignocellulosic substrate making it possible to increase or even double the productivity and the concentration of cellulases. and hemicellulases produced relative to the methods of the prior art, and to produce these cellulases continuously for an increased duration.
  • the method according to the present invention makes it possible to increase or even double the productivity and the concentration of cellulases and hemicellulases produced while maintaining the production yield. cellulases relative to the carbon substrate used constant compared to the methods of the prior art.
  • the present invention relates to a method for producing cellulases and hemicellulases by a strain belonging to a filamentous fungus, a stirred and aerated bioreactor comprising at least two phases:
  • a continuous cellulase production phase b) in which at least one inducing carbon substrate is fed at a feed rate that is at least constant for a duration of at least greater than 200 h, said at least one inducing carbon substrate being at least one aqueous solution of hemicellulosic hydrolyzate resulting from an acid pretreatment of a lignocellulosic substrate, said aqueous solution of hemicellulosic hydrolyzate not being subjected to prior sterilization and no pH rectification, said pH of the aqueous solution being between 0.5 and 3, the mass of the reaction volume being kept constant by withdrawing a fraction of said reaction volume, said phase b) operating at a dilution ratio of between 0.001 and 0.02 h-1.
  • An advantage of the present invention is that it allows to improve the productivity and the protein concentration produced over an increased operating time.
  • the process according to the invention makes it possible to obtain a protein concentration of greater than 100 g / L. These performances were maintained experimentally in continuous mode for more than 400 hours.
  • the high productivity obtained makes it possible to reduce the costs of investment in a bioreactor. Longer life reduces the time spent cleaning bioreactors and seeding lines.
  • the high concentration of cellulases reduces post-treatment costs.
  • Another advantage of the continuous process according to the invention is that it requires a low k L a because of both the application of a low dilution rate in the b) continuous production and use phase. of a specific inducing carbon substrate solution in said phase b), which makes it possible to maintain a low viscosity in the reaction medium.
  • the process according to the invention preferably operates at a pH of between 3 and 6, at a temperature of between 20 and 35 ° C., at a vvm, that is to say at a rate of aeration expressed in terms of volume of under normal conditions of temperature and pressure, per volume of reaction medium and per minute of between 0.3 and 1.5 min-1, preferably between 0.3 and 1 min-1, and with agitation allowing to obtain a partial pressure of oxygen in the reaction medium of between 20% and 60% and preferably between 20 and 40%.
  • the process according to the invention operates at a vvm of 0.5 min-1 and with agitation to regulate the oxygen partial pressure to 30%.
  • said method comprises a phase a) of growth of the strain belonging to a filamentous fungus, preferably the fungus Trichoderma reesei, in the presence of at least one carbonaceous growth substrate in closed reactor, said growth phase being carried out with a concentration of carbonaceous growth substrate of between 10 and 90 g / l.
  • Said strain used in the process according to the invention is a strain of a filamentous fungus belonging preferably to the genera Trichoderma, Aspergillus, Penicillium or Schizophyllum, and preferably said strain belongs to the species Trichoderma reesei.
  • the strain used preferably belonging to the species Trichoderma reesei, can advantageously be modified to improve the cellulolytic and / or hemicellulolytic enzymes by mutation-selection methods, for example the IFP CL847 strain.
  • a strain improved by genetic recombination techniques can also be used.
  • the strain is cultivated in stirred and aerated reactors under conditions compatible with its growth and production. cellulases.
  • Other microorganism strains producing cellulases by processes similar to those used for Trichoderma can be used.
  • the strain used is a strain of Trichoderma reesei modified by mutation, selection or genetic recombination.
  • the strain may advantageously be chosen from strains CL847, RutC30, MCG77, or MCG80.
  • the carbonaceous growth substrate used in said growth phase is advantageously chosen from industrial soluble sugars, and preferably from glucose, lactose, xylose, the residues obtained after ethanolic fermentation of the monomeric sugars of the lignocellulosic substrate enzymatic hydrolysates and the extracts of the hemicellulosic fraction in the form of monomers originating from pretreated lignocellulosic substrate, used alone or as a mixture.
  • said carbon substrate is advantageously introduced into the reactor before sterilization of said reactor or is sterilized separately and introduced into the previously sterilized reactor.
  • the concentration of carbonaceous growth substrate is between 30 and 70 g / l.
  • the growth phase a) is carried out over a period of between 30 and 70h and preferably between 40 and 60h.
  • the growth phase a) operates at a pH of 4.8 and at a temperature of 27 ° C.
  • said method comprises a continuous b) production phase of cellulases in which at least one inducing carbon substrate is fed at a feed rate of at least constant, for a duration of at least greater than 200 h, said carbon substrate being at least one aqueous solution of hemicellulosic hydrolyzate resulting from an acidic pretreatment of a lignocellulosic substrate, said aqueous hemicellulose hydrolyzate solution not being subjected to prior sterilization and no pH rectification, said pH of the aqueous solution being included between 0.5 and 3, the mass of the reaction volume being kept constant by withdrawing a fraction of said reaction volume, said phase b) operating at a dilution ratio of between 0.001 and 0.02 h -1.
  • the lignocellulosic substrate making it possible to obtain the aqueous solution of hemicellulosic hydrolyzate used in stage b) of the process according to the invention is a source of carbohydrates composed of three main components: cellulose (35 to 50%), hemicellulose (20 to 30%) which are polysaccharides essentially consisting of pentoses and hexoses and lignin (15 to 25%) which is a macromolecule of complex structure and high molecular weight, composed of aromatic alcohols connected by bonds ether.
  • Said substrate is advantageously chosen from straws, wood, forest crops, residues of alcoholic, sugar and cereal plants, residues from the paper industry and transformation products of lignocellulosic materials.
  • the acid pretreatment undergone by said lignocellulosic substrate is implemented according to the acid pretreatments known to those skilled in the art.
  • the acidic pretreatment is an acid hydrolysis, an acidic cooking or a steam explosion with prior impregnation of said lignocellulosic substrate with an aqueous solution of sulfuric acid.
  • the aqueous solution of hemicellulosic hydrolyzate thus obtained has a pH of between 0.5 and 3 and is used without a step of sterilization or rectification of the pH.
  • said aqueous hemicellulose hydrolyzate solution has a pH of between 0.5 and 2.
  • the inducing carbon substrate used in stage b) of the process according to the invention is advantageously an aqueous solution of hemicellulosic hydrolyzate resulting from an acidic pretreatment of a lignocellulosic substrate alone or as a mixture with at least one other carbon substrate having not undergone sterilization.
  • said carbon substrates are chosen from inducing or non-inducing sugars, preferably chosen from lactose, glucose, cellobiose and xylose, taken alone or as a mixture. Said substrates are dissolved in said aqueous solution of hemicellulosic hydrolyzate.
  • the inducing carbon substrate is an aqueous solution of hemicellulosic hydrolyzate resulting from an acid pretreatment of a lignocellulosic substrate mixed with at least one other carbon substrate which has not undergone sterilization
  • said inducing carbon substrate has a concentration between 200 and 600 g / L depending on the degree of solubility of the carbon substrates used.
  • the inducing carbon substrate is an aqueous solution of hemicellulosic hydrolyzate resulting from an acid pretreatment of a lignocellulosic substrate alone
  • said inducing carbon substrate has a concentration of between 40 and 400 g / l after having optionally been concentrated.
  • said inducing carbon substrate is fed at a feed rate of at least constant.
  • the feed rate of said inducing carbon substrate is between 35 and 140 and preferably between 35 and 60 mg of inductive carbon substrate per gram of dry weight of strain per hour.
  • the feed rate is gradually increased in phase b), more preferably gradually increased until it is doubled in the first hours of implementation of phase b), preferably after at least 24 hours and preferably after at least 48 hours of implementation of phase b).
  • the duration of the continuous b) cellulase production phase is at least greater than 200 h, preferably at least greater than 300 h and preferably at least greater than 400 h.
  • the mass of the reaction volume is kept constant by withdrawing a fraction of said reaction volume.
  • the withdrawal is performed according to the withdrawal methods known to those skilled in the art such as for example through a control system and a controllable withdrawal pump.
  • the withdrawal rate is at least equal to the feed rate in phase b).
  • the dilution ratio defined as the ratio of the withdrawal rate on the reaction volume of the reactor during the continuous production phase b), is advantageously between 0.001 h -1 and 0.02 h -1. and preferably between 0.002 and 0.008h-1.
  • the most preferred dilution rate is 0.004 hr.
  • phase b) operates at a pH between 3 and 5.5 and at a temperature between 20 and 30 ° C.
  • An optional phase a ') of production carried out in a continuous feed reactor of at least one inducing carbon substrate, during which no withdrawal of the contents of the fermenter is carried out, that is to say in fed batch mode. is advantageously implemented between phase a) and phase b).
  • phase a ' makes it possible not to extract a fraction of the reaction volume containing the filamentous fungal strain while the protein concentrations produced are still low.
  • the said inducing carbon substrate used in step a ') is identical to the inducing carbon substrate used in the production phase b).
  • the feed rate of said inducing carbon substrate is between 35 and 140 and preferably between 35 and 60 mg of inductive carbon substrate per gram of dry weight of strain per hour. Said feed rate is kept constant throughout the duration of phase a ').
  • phase a ' is carried out for a period of between 50 and 150 hours and preferably between 70 and 130 hours.
  • the phase a ') operates at a pH between 3 and 5.5 and at a temperature between 20 and 30 ° C.
  • the method according to the present invention makes it possible to increase or even to double the productivity as well as the concentration of cellulases and hemicellulases produced by compared to the processes of the prior art, and to produce these cellulases continuously for an increased duration.
  • Example 1 shows a culture using the reference conditions of patent FR-B-2 881 753.
  • Example 1 illustrates a process for producing cellulases and hemicellulases comprising a growth phase and a production phase in fed batch mode. "implemented for 167 h
  • the production of cellulases and hemicellulases is carried out in a mechanically stirred reactor of 3 L.
  • the mineral medium has the following composition: KOH 1.66 g / l, H3PO4 85% 2 ml / L, (NH 4 ) 2 SO 4 2, 8 g / L, MgSO 4 , 7H 2 0 0.6 g / L, CaCl 2 0.6 g / L, MnSO 4 3.2 mg / L, ZnSO 4 , 7H 2 O 2.8 mg / L , CoCl 2, 4.0 mg / L, FeSO 4 , 7H 2 O 10 mg / L, Corn Steep 1, 2 g / L, antifoam 0.5 mL / L.
  • a liquid preculture of the strain of Trichoderma reesei CL847 is carried out.
  • the mineral medium of the preculture is identical to that of the reactor apart from the addition of potassium phthalate to 5 g / L to buffer the pH.
  • the growth of the preculture mushroom is made using glucose as a carbon substrate at a concentration of 30 g.L-1. Inoculum growth lasts 2 to 3 days and is performed at 28 ° C in a shaking incubator at atmospheric pressure.
  • the reactor containing the mineral medium is sterilized at 120 ° C for 20 minutes, the carbon source glucose is sterilized separately at 120 ° C for 20 minutes and then added to the reactor in a sterile manner so as to have a final concentration of 30 g / l.
  • the reactor is inoculated at 10% (v / v) with said liquid preculture of the Trichoderma reesei strain CL847 as soon as the residual concentration of glucose in the preculture is less than 15 g / l.
  • the experiment carried out in bioreactor comprises two phases:
  • the aeration is 0.5 vvm and stirring is increased between 200 and 800 rpm depending on the p0 2 (dissolved oxygen pressure), which is regulated at 30%.
  • a protein production phase in "fed batch” mode After 30 hours, a lactose carbonaceous substrate solution at 250 ⁇ l -1 is continuously injected at a rate of 4 ml / h or 35 mg of lactose per g of Trichoderma reesei strain CL847 and hour until 167 hours. The temperature is lowered to 25 ° C and the pH to 4 until the end of the culture. The pH is regulated by addition of a solution of ammonia at 5.5 N which provides the nitrogen necessary for the synthesis of cellulases and hemicellulases excreted. The dissolved oxygen content is maintained at 30% by the action of agitation
  • Cellulase production is monitored by the extracellular protein assay using the Lowry method and standard BSA after separation of the mycelium by filtration or centrifugation.
  • Cellulolytic activities determined are:
  • the filter paper activity (UPF: filter paper unit) which allows the determination of the overall activity of the endoglucanase and exoglucanase enzymatic pool
  • the UPF activity is measured on Whatman # 1 paper according to the procedure recommended by the IUPAC biotechnology commission, at the initial concentration of 50 gL "1 , the test portion of the enzyme solution to be analyzed which releases the equivalent is determined. 2 gl -1 glucose (colorimetric assay) in 60 minutes.
  • the principle of the filter paper activity is to determine, by dinitrosalicylic acid (DNS) assay, the amount of reduced sugars obtained from Whatman # 1 paper.
  • the substrate used to determine the ⁇ -glucosidase activity is p-nitrophenyl ⁇ -D-glucopyranoside (PNPG). It is cleaved by ⁇ -glucosidase which releases p-nitrophenol.
  • a unit of ⁇ -glucosidase activity is defined as the amount of enzyme required to produce 1 pmol of nitrophenol from PNPG per minute and is expressed in IU / ml.
  • Specific activities are obtained by dividing the activities expressed in lU / mL by the cellulase concentration. They are expressed in lU.mg "1 .
  • the final productivity is calculated taking into account the total mass of cellulases and hemicellulases produced during the production phase (including samples) and dividing by the duration of the production phase and the useful volume of the reactor.
  • biomass characterizes the strain of Trichoderma reesei CL847.
  • Protein is defined as the enzymatic cocktail obtained comprising the cellulases and hemicellulases produced.
  • ⁇ -Glucosidase specific 0.8 IU / mg
  • Example 2 shows a similar culture to Example 1 except that the "fed-batch" mode is continued beyond 200h with the same feed substrate. It is noted that there is a stop production of cellulases and hemicellulases after 200 h. These are even starting to deteriorate as the concentration drops from 37 g / L to 35 g / L. Biomass increases during this period until reaching a concentration of 20.9 g / L. The assays show that there has been a deficiency of sulfur.
  • Example 3 according to the invention.
  • Example 3 is run under the same conditions as Example 1 but has 3 phases:
  • a second phase a ') in "fed-batch" mode is launched at the time of depletion of the glucose carbon substrate with a solution of hemicellulosic hydrolyzate obtained from a straw pretreated by steam explosion with prior impregnation of H2SO4 in which glucose and lactose have been dissolved to arrive at an overall concentration of carbon substrate of 500 g / l.
  • This solution is not sterilized and its pH is not raised and is 1.
  • a flow of 4 mL / h (a flow of 35 mg of sugar per g strain of Trichoderma reesei CL847 and per hour) is applied. This phase lasts 100 hours.
  • a phase b) of continuous production of cellulases and hemicellulases is launched thereafter.
  • the feed rate is kept constant at 4 mL / h throughout the experiment.
  • the reactor is maintained at a constant weight by continually withdrawing the must through a control system and a controllable withdrawal pump.
  • the dilution ratio is 0.002 h -1.
  • Example 4 is analogous to Example 3 except that the continuous production phase b) is launched directly after the growth phase a) in "batch" mode and the feed rate of the inducing carbon substrate in the phase b Continuous production is gradually increased from 4 mL / h to 8 mL / h, i.e., increased by 1 mL every 12 h after launching said phase b).
  • the inducing carbon substrate used is the same as that of Example 3, that is to say a solution of hemicellulose hydrolyzate obtained from a straw pretreated by steam explosion with prior impregnation of H2SO4 in which was dissolved glucose and lactose. This solution is not sterilized and its pH is not raised and is 1.
  • the operating conditions used in phases a) and b) are identical to those used in Example 3. At the end of the increase in feed rate inducing carbon substrate, the dilution ratio is 0.004 h -1 The mass of the reaction volume is kept constant.
  • the final productivity of the experiment is 0.39 gL -1 .h -1 . It is almost doubled compared to Example 1. This reduces investment costs. The final concentration of proteins is almost tripled. This makes it possible to reduce post-treatment costs, in particular, if necessary, the concentration of the proteins produced.
  • the culture does not require a high ki.a (approximately 75 h -1 ) thanks to the low dilution rate applied thus allowing to have low operating costs related to agitation and aeration.
  • the productivity is almost doubled compared to Example 1 and the protein concentration almost tripled. Said concentration is maintained for more than 300 hours
  • Example 5 shows the effect of the non-sterilization of the hemicellulose hydrolyzate solution obtained from a straw pretreated by steam explosion with prior impregnation of H2SO4 on the performance of the process.
  • Example 5 is run under the same conditions as Example 4 except that the hydrolyzate solution is sterilized before use.
  • the concentration of said solution is 250 g / l.
  • the culture results in a high accumulation of the T. reesei strain and a low production of cellulases.
  • the oxygen demand is very important at the end of the culture with a necessary ki_a greater than 70 h -1 .
  • the production yield of protein relative to the carbon substrate is less than 0.1 g / g whereas it is 0.3 g / g for Examples 1 to 4.
  • the analytical determinations on the final must give the following results Biomass: g / L: 99.8
  • Example 6 shows the disadvantage of the implementation of continuous phase with high dilution rates which lead to a viscous medium and problems of plugging of the discharge pump because of the morphology of the mushroom when it is in growth phase.
  • the ki_a and therefore the operating cost associated with agitation and aeration of the medium is high.
  • Example 6 is carried out under the same conditions as Example 4 with a first phase a) of growth in "batch" mode which lasts 50 hours and a continuous b) production phase of cellulases and hemicellulases.
  • the solution that feeds the production phase is a hemicellulosic hydrolyzate solution that is not sterilized in which lactose is dissolved at 250 g / L.
  • the feed rate of the inducing carbon substrate is 13 ml / h which corresponds to 54 mg of sugars per g of Trichoderma reesei strain CL847 and per hour.
  • the mass of the reaction volume is kept constant and the dilution ratio applied is 0.025 h -1 .
  • Example 7 is carried out under the same conditions as in Example 3, with the difference that the phase in "batch” mode is carried out with a glucose concentration of 65 g / l.
  • Phase a ') in "fed-batch” mode and phase b) in continuous mode production are carried out under the same conditions, with the difference that the solution which feeds phases a') and b) is a lactose solution. at 250 g / L acidified by adding sulfuric acid H2SO4 so that said solution has a pH of 1.5.
  • the Changes in cell biomass and protein concentrations are shown in Figure 4. Also shown in Figure 4 is the evolution of concentrations of sulfates and ammonium ions which are non-limiting. The experiment does not make it possible to obtain a protein concentration higher than 50 g / l. The protein concentration stabilizes at 50 g / L after 400 hours.
  • Example 8 is carried out under the same conditions as in Example 3 except that the hemicellulose hydrolyzate solution obtained from a straw pretreated by steam explosion with prior impregnation of H2SO4 in which glucose has been dissolved and lactose is not sterilized but undergoes a pH correction by adding NaOH. Its pH is raised to 4.

Abstract

La présente invention concerne un procédé de production de cellulases et d'hémicellulases par une souche appartenant à un champignon filamenteux, en bioréacteur agité et aéré comprenant au moins deux phases, une phase a) de croissance de ladite souche en présence d'au moins un substrat carboné de croissance en réacteur fermé, ladite phase de croissance étant réalisée avec une concentration en substrat carboné de croissance comprise entre 10 et 90 g/L, une phase b) continue de production de cellulases dans laquelle au moins un substrat carboné inducteur est alimenté à un débit d'alimentation au moins constant pendant une durée au moins supérieure à 200h, ledit substrat carboné étant au moins une solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique issu d'un prétraitement acide d'un substrat lignocellulosique, ladite solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique ne subissant pas de stérilisation préalable et pas de rectification de pH, ledit pH de la solution aqueuse étant compris entre 0,5 et 3, la masse du volume réactionnel étant maintenu constant par soutirage d'une fraction dudit volume réactionnel, ladite phase b) opérant à un taux de dilution compris entre 0,001 et 0,02 h-1.

Description

PROCEDE DE PRODUCTION DE CELLULASES EN CONTINU PAR UN CHAMPIGNON FILAMENTEUX UTILISANT UN SUBSTRAT CARBONE ISSU D'UN PRETRAITEMENT ACIDE
DOMAINE DE L'INVENTION
La présente invention concerne la production de cellulases et d'hémicellulases, notamment dans le cadre de la production d'éthanol à partir de matériaux ligno- cellulosiques. En particulier, la présente invention concerne un procédé de production de cellulase en continu à partir d'un champignon filamenteux.
ART ANTÉRIEUR
La mise au point de procédés économiquement viables de production de biocarburants de 2ème génération est aujourd'hui un vaste sujet d'actualité. Ces derniers sont produits à partir de biomasse lignocellulosique et posent moins de problèmes de concurrence d'usage des terres agricoles avec l'alimentaire, par rapport aux biocarburants dits de première génération qui sont produits à partir de canne à sucre, maïs, blé ou betterave.
La biomasse ligno-cellulosique se caractérise par une structure complexe constituée de trois principales fractions: la cellulose, les hémicelluloses et les lignines. De façon classique, le procédé de transformation en éthanol comprend plusieurs étapes. Le prétraitement permet de rendre la cellulose accessible aux enzymes qui sont des cellulases. L'étape d'hydrolyse enzymatique permet la transformation de la cellulose en glucose qui est ensuite transformée en éthanol lors de l'étape de fermentation par, en général, la levure Saccharomyces cerevisiae. Enfin, l'étape de distillation va permettre de séparer et récupérer l'éthanol du moût de fermentation. Les différentes études technico-économiques démontrent que la réduction du coût des cellulases est un des points-clés des procédés de production biologique d'éthanol à partir des matières premières lignocellulosiques. A l'heure actuelle, les cellulases industrielles sont principalement produites par un champignon filamenteux, Trichoderma reesei, en raison de son fort pouvoir de sécrétion.
Trichoderma reesei est le microorganisme le plus utilisé pour la production de cellulases. Les souches sauvages ont la faculté d'excréter, en présence d'un substrat inducteur, la cellulose par exemple, le cocktail enzymatique considéré comme le mieux adapté à l'hydrolyse de la cellulose. Les enzymes du cocktail enzymatique contiennent trois grands types d'activités : les endoglucanases, les exoglucanases et les cellobiases. D'autres protéines possédant des propriétés indispensables à l'hydrolyse des matériaux ligno-cellulosiques sont également produites par Trichoderma reesei, les xylanases par exemple. La présence d'un substrat inducteur est indispensable à l'expression des enzymes cellulolytiques et/ou hémicellulolytiques.
La régulation des gènes de cellulases sur différentes sources de carbone a été étudiée dans le détail. Elles sont induites en présence de cellulose, de ses produits d'hydrolyse (exemple: cellobiose) ou de certains oligosaccharides comme le lactose ou le sophorose (llmén et al., 1997; Appl. Environ. Microbiol. 63: 1298-1306).
Les techniques de génétique classique par mutation ont permis la sélection de souches de Trichoderma reesei hyperproductrices de cellulases telles que les souches MCG77 (Gallo - brevet US 4275 167), MCG 80 (Allen, A.L. et Andreotti, R.E., Biotechnol- Bioengi 1982, 12, 451 -459 1982), RUT C30 (Montenecourt, B.S. et Eveleigh, D.E., Appl. Environ. Microbiol. 1977, 34, 777-782) et CL847 (Durand et al, 1984, Proc. Colloque SFM "Génétique des microorganismes industriels". Paris. H. HESLOT Ed, pp 39-50).
Le procédé de production de cellulases par Trichoderma reesei a fait l'objet d'améliorations importantes en vue de l'extrapolation à l'échelle industrielle. La stratégie qui est appliquée industriellement est de faire une croissance rapide du champignon jusqu'à une concentration donnée dans une étape appelée phase de croissance dudit champignon, puis d'induire la production de cellulases à partir dudit champignon afin de maximiser la productivité et le rendement dans une étape appelée phase et de production. Ladite phase de croissance est en général réalisé dans un réacteur fermé, c'est-à-dire en mode "batch" selon la terminologie anglo- saxonne. Ladite phase de production, est en général réalisée dans un réacteur à alimentation continue au cours de laquelle aucun soutirage du contenu du réacteur n'est effectué, c'est à dire en mode "fed batch" selon la terminologie anglo-saxonne. Pour obtenir de bonnes productivités en enzymes, il est nécessaire d'apporter une source de carbone rapidement assimilable pour la croissance de Trichoderma reesei dans la phase de croissance et un substrat inducteur qui permette l'expression des cellulases et la sécrétion dans le milieu de culture dans la phase de production. La cellulose peut jouer ces deux rôles ; cependant, elle est difficile d'utilisation au stade industriel et a été remplacée par des sources de carbone solubles tel que le lactose, qui permet l'expression des cellulases. D'autres sucres solubles comme le cellobiose et le sophorose ont été décrits comme substrats inducteurs, mais ils sont trop onéreux pour être utilisés au stade industriel. Cependant, les productions de cellulases par Trichoderma reesei, avec des substrats solubles, sont très inférieures à celles obtenues sur cellulose en mode "batch". Ceci est dû à l'effet répresseur des sucres facilement assimilables, à forte concentration.
L'alimentation en continu en mode "fed-batch" des substrats carbonés inducteurs solubles a permis de lever la répression catabolique en limitant la concentration résiduelle de substrat carboné dans les cultures et en optimisant la quantité de sucre permettant d'obtenir un meilleur rendement et une meilleure productivité enzymatique. Par exemple, le brevet FR-B-2 881 753 décrit un procédé de production de cellulases comprenant deux étapes :
Une phase de croissance en mode "batch" où il est nécessaire d'apporter une source de carbone rapidement assimilable pour la croissance de Trichoderma reesei puis
Une phase de production en mode "fed-batch" utilisant un substrat inducteur tel que par exemple le lactose qui permet l'expression des cellulases et la sécrétion dans le milieu de culture. L'alimentation en substrat carboné soluble se fait en continu, à un débit spécifique optimal appliqué, exprimé en mg de substrat par gramme en poids sec de champignon filamenteux et par heure, compris entre 35 et 45 mg.g-1.h-1.
Dans ce brevet, l'étape de production des protéines n'est pas mis en œuvre au delà d'environ 170 h. Ce protocole permet d'aboutir à une concentration en protéines de l'ordre de 35 à 40 g/L avec une productivité de l'ordre de 0,2 g.L"1.h"1.
Cependant, le réacteur doit être nettoyé et une nouvelle chaîne d'ensemencement doit être réalisée. L'inconvénient de ce mode opératoire est une productivité trop faible qui fait augmenter l'investissement initial en nombre de fermenteurs de production d'enzymes. La concentration en protéines obtenue est également peu élevée et nécessite souvent une étape de concentration après filtration du mycellium. Tout ceci contribue à rendre le procédé de production d'éthanol de deuxième génération peu compétitif.
Un objet de la présente invention est de fournir un procédé de production de cellulases et d'hémicellulases utilisant au moins un substrat carboné inducteur spécifique issu du prétraitement acide d'un substrat lignocellulosique permettant d'augmenter voire de doubler la productivité et la concentration en cellulases et hémicellulases produites par rapport aux procédés de l'art antérieur, et de produire ces cellulases en continu pendant une durée accrue. Le procédé selon la présenté invention permet d'augmenter voire de doubler la productivité et la concentration en cellulases et hémicellulases produites tout en maintenant le rendement de production de cellulases par rapport au substrat carboné utilisé constant par rapport aux procédés de l'art antérieur.
RÉSUMÉ ET INTÉRÊT DE L'INVENTION
La présente invention concerne un procédé de production de cellulases et hémicellulases par une souche appartenant à un champignon filamenteux, en, bioréacteur agité et aéré comprenant au moins deux phases :
- une phase a) de croissance de ladite souche en présence d'au moins un substrat carboné de croissance en réacteur fermé, ladite phase de croissance étant réalisée avec une concentration en substrat carboné de croissance comprise entre 10 et 90 g/L
- une phase b) continue de production de cellulases dans laquelle au moins un substrat carboné inducteur est alimenté à un débit d'alimentation au moins constant pendant une durée au moins supérieure à 200h, ledit substrat carboné inducteur étant au moins une solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique issu d'un prétraitement acide d'un substrat lignocellulosique, ladite solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique ne subissant pas de stérilisation préalable et pas de rectification de pH, ledit pH de la solution aqueuse étant compris entre 0,5 et 3, la masse du volume réactionnel étant maintenu constant par soutirage d'une fraction dudit volume réactionnel, ladite phase b) opérant à un taux de dilution compris entre 0,001 et 0,02 h-1.
Avantage de l'invention
Un avantage de la présente invention est de permettre d'améliorer la productivité et la concentration en protéines produites sur une durée de fonctionnement accrue. En particulier, le procédé selon l'invention permet l'obtention d'une concentration en protéines supérieure à 100g.L-1. Ces performances ont été maintenues expérimentalement en mode continu pendant plus de 400 h.
La forte productivité obtenue permet de réduire les coûts d'investissements en bioréacteur. La durée prolongée permet de réduire le temps consacré au nettoyage des bioréacteurs et aux chaînes d'ensemencement. La forte concentration en cellulases permet de réduire les coûts de post-traitement. Un autre avantage du procédé continu selon l'invention est qu'il nécessite un faible kLa du fait, à la fois de l'application d'un faible taux de dilution dans la phase b) continue de production et de l'utilisation d'une solution de substrat carboné inducteur spécifique dans ladite phase b), ce qui permet de maintenir une faible viscosité dans le milieu réactionnel.
DESCRIPTION DÉTAILLÉE DE L'INVENTION
Le procédé selon l'invention opère de préférence à un pH compris entre 3 et 6, à une température comprise entre 20 et 35 °C, à une vvm, c'est-à-dire à un taux d'aération exprimé en volume d'air, dans les conditions normales de température et de pression, par volume de milieu réactionnel et par minute comprise entre 0,3 et 1 ,5 min-1 , de préférence entre 0,3 et 1 min-1 et avec une agitation permettant d'obtenir une pression partielle en oxygène dans le milieu réactionnel comprise entre 20% et 60% et de préférence comprise entre 20 et 40%.
De préférence, le procédé selon l'invention opère à une vvm de 0.5 min-1 et avec une agitation permettant de réguler la pression partielle en oxygène à 30 %.
Conformément à l'invention, ledit procédé comprend une phase a) de croissance de la souche appartenant à un champignon filamenteux, de préférence le champignon Trichoderma reesei, en présence d'au moins un substrat carboné de croissance en réacteur fermé, ladite phase de croissance étant réalisée avec une concentration en substrat carboné de croissance comprise entre 10 et 90 g/L. Ladite souche mise en oeuvre dans le procédé selon l'invention est une souche d'un champignon filamenteux appartenant de préférence aux genres Trichoderma, Aspergi/lus, Pénicillium ou Schizophyllum, et de manière préférée ladite souche appartient à l'espèce Trichoderma reesei. La souche utilisée appartenant de préférence à l'espèce Trichoderma reesei, peut avantageusement être modifiée pour améliorer les enzymes cellulolytiques et/ou hémicellulolytiques par des procédés de mutation-sélection, comme par exemple la souche IFP CL847. Une souche améliorée par les techniques de recombinaison génétique peut également être utilisée. Ladite souche est cultivée en réacteurs agités et aérés dans des conditions compatibles avec sa croissance et la production de cellulases. D'autres souches de microorganismes produisant des cellulases selon des processus similaires à ceux utilisés pour Trichoderma peuvent être utilisées.
De manière très préférée, la souche utilisée est une souche de Trichoderma reesei modifiée par mutation, sélection ou recombinaison génétique.
La souche peut avantageusement être choisie parmi les souches CL847, RutC30, MCG77, ou MCG80.
Le substrat carboné de croissance utilisé dans ladite phase de croissance est avantageusement choisi parmi les sucres solubles industriels, et de préférence parmi le glucose, le lactose, le xylose, les résidus obtenus après fermentation éthanolique des sucres monomères des hydrolysats enzymatiques de substrat lignocellulosique et les extraits de la fraction hémicellulosique sous forme de monomères provenant de substrat lignocellulosique prétraité, utilisé seul ou en mélange.
Selon sa nature, ledit substrat carboné est avantageusement introduit dans le réacteur avant stérilisation dudit réacteur ou est stérilisé séparément et introduit dans le réacteur préalablement stérilisé.
De préférence, la concentration en substrat carboné de croissance est comprise entre 30 et 70 g/L. De préférence, la phase a) de croissance est réalisée sur une durée comprise entre 30 et 70h et de préférence entre 40 et 60h.
De préférence, la phase a) de croissance opère à un pH de 4,8 et à une température de 27°C. Conformément à l'invention, ledit procédé comprend une phase b) continue de production de cellulases dans laquelle au moins un substrat carboné inducteur est alimenté à un débit d'alimentation au moins constant, pendant une durée au moins supérieure à 200h, ledit substrat carboné étant au moins une solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique issu d'un prétraitement acide d'un substrat lignocellulosique, ladite solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique ne subissant pas de stérilisation préalable et pas de rectification de pH, ledit pH de la solution aqueuse étant compris entre 0,5 et 3, la masse du volume réactionnel étant maintenu constant par soutirage d'une fraction dudit volume réactionnel, ladite phase b) opérant à un taux de dilution compris entre 0,001 et 0,02 h-1. Ladite phase continue est avantageusement réalisée dans un réacteur à alimentation continue au cours de laquelle une fraction du volume réactionnel est soutirée de manière à maintenir la masse du volume réactionnel constante. Ladite phase continue est appelé mode "chemostat" selon la terminologie anglo-saxonne. Le substrat lignocellulosique permettant d'obtenir la solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique utilisée dans la phase b) du procédé selon l'invention est une source d'hydrates de carbones composée de trois principaux constituants : la cellulose (35 à 50%), les hémicelluloses (20 à 30%) qui sont des polysaccharides essentiellement constitués de pentoses et d'hexoses et la lignine (15 à 25%) qui est une macromolécule de structure complexe et de haut poids moléculaire, composé d'alcools aromatiques reliés par des liaisons éther. Ledit substrat est avantageusement choisi parmi les pailles, le bois, les cultures forestières, les résidus de plantes alcooligènes, sucrières et céréalières, les résidus de l'industrie papetière et les produits de transformation des matériaux lignocellulosique. Le prétraitement acide subi par ledit substrat lignocellulosique est mis en œuvre selon les prétraitements acides connus de l'homme du métier. De préférence, le prétraitement acide est une hydrolyse acide, une cuisson acide ou une explosion à la vapeur avec imprégnation préalable dudit substrat lignocellulosique avec une solution aqueuse d'acide sulfurique. La solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique ainsi obtenue présente un pH compris entre 0,5 et 3 et est utilisée sans étape de stérilisation ni de rectification du PH.
De préférence, ladite solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique présente un pH compris entre 0,5 et 2.
Le substrat carboné inducteur utilisé dans la phase b) du procédé selon l'invention est avantageusement une solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique issu d'un prétraitement acide d'un substrat lignocellulosique seule ou en mélange avec au moins un autre substrat carboné n'ayant pas subi de stérilisation.
De préférence, lesdits substrats carbonés sont choisis parmi des sucres inducteurs ou non inducteurs, de manière préférée choisis parmi le lactose, le glucose, le cellobiose et le xylose, pris seuls ou en mélange. Lesdits substrats sont dissouts dans ladite solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique.
Dans le cas où le substrat carboné inducteur est une solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique issu d'un prétraitement acide d'un substrat lignocellulosique en mélange avec au moins un autre substrat carboné n'ayant pas subi de stérilisation, ledit substrat carboné inducteur présente une concentration comprise entre 200 et 600 g/L selon le degré de solubilité des substrats carbonés utilisés.
Dans le cas où le substrat carboné inducteur est une solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique issu d'un prétraitement acide d'un substrat lignocellulosique seule, ledit substrat carboné inducteur présente une concentration comprise entre 40 et 400 g/L après avoir éventuellement été concentrée.
L'utilisation dudit substrat carboné inducteur spécifique issu du prétraitement acide d'un substrat lignocellulosique permet la mise en œuvre de la phase b) de production de cellulases sur une durée accrue, de préférence supérieure à 200h, par rapport aux procédé de l'art antérieur.
Conformément à l'invention, ledit substrat carboné inducteur est alimenté à un débit d'alimentation au moins constant. De préférence, le débit d'alimentation dudit substrat carboné inducteur est compris entre 35 et 140 et de préférence entre 35 et 60 mg de substrat carboné inducteur par gramme en poids sec de souche et par heure.
De manière préférée, le débit d'alimentation est graduellement augmenté dans la phase b), de manière plus préférée graduellement augmenté jusqu'à être doublé dans les premières heures de mise en œuvre de la phase b), de préférence après au moins 24h et de manière préférée après au moins 48h de mise en œuvre de la phase b).
Conformément à l'invention, la durée de la phase b) continue de production de cellulases est au moins supérieure à 200h, de préférence au moins supérieure à 300h et de manière préféré au moins supérieure à 400h.
Dans la phase b), la masse du volume réactionnel est maintenue constante par soutirage d'une fraction dudit volume réactionnel. De préférence, le soutirage est réalisé selon les méthodes de soutirage connues de l'homme du métier telles que par exemple grâce à un système de régulation et à une pompe de soutirage commandable.
De préférence, le débit de soutirage est au moins égal au débit d'alimentation dans la phase b).
Conformément à l'invention, le taux de dilution, défini comme le ratio du débit de soutirage sur le volume réactionnel du réacteur lors de la phase b) continue de production, est avantageusement compris entre 0,001 h-1 et 0,02 h-1 et de manière préférée entre 0,002 et 0,008h-1. Le taux de dilution très préféré est de 0,004 h- .
De préférence, la phase b) opère à un pH compris entre 3 et 5,5 et à une température comprise entre 20 et 30°C. Une phase optionnelle a') de production réalisée dans un réacteur à alimentation continue d'au moins un substrat carboné inducteur, au cours de laquelle aucun soutirage du contenu du fermenteur n'est effectué, c'est à dire en mode "fed batch", est avantageusement mise en œuvre entre la phase a) et la phase b).
La mise en oeuvre de ladite phase a') permet de ne pas soutirer de fraction du volume réactionnel contenant la souche de champignon filamenteux alors que les concentrations en protéines produites sont encore faibles.
Ledit substrat carboné inducteur utilisé dans la phase a') est identique au substrat carboné inducteur utilisé dans la phase b) de production.
De préférence, le débit d'alimentation dudit substrat carboné inducteur est compris entre 35 et 140 et de préférence entre 35 et 60 mg de substrat carboné inducteur par gramme en poids sec de souche et par heure. Ledit débit d'alimentation est maintenu constant pendant toute la durée de la phase a').
De préférence, la phase a') est mise en œuvre pendant une durée comprise entre 50 et 150 h et de préférence entre 70 et 130h.
De préférence, la phase a') opère à un pH compris entre 3 et 5,5 et à une température comprise entre 20 et 30°C.
Le procédé selon la présente invention permet d'augmenter voire de doubler la productivité ainsi que la concentration en cellulases et hémicellulases produites par rapport aux procédés de l'art antérieur, et de produire ces cellulases en continu pendant une durée accrue.
EXEMPLES
Exemple 1 : non conforme
L'exemple 1 présente une culture utilisant les conditions de référence du brevet FR- B-2 881 753. L'exemple 1 illustre un procédé de production de cellulases et hémicellulases comportant une phase de croissance et une phase de production en mode "fed batch" mise en œuvre pendant 167 h
La production de cellulases et hémicellulases est effectuée en réacteur agité mécaniquement de 3 L. Le milieu minéral a la composition suivante : KOH 1 ,66 g./L, H3PO4 85 % 2 ml/L, (NH4)2S04 2,8 g/L, MgS04, 7 H20 0,6 g/L, CaCL2 0,6 g/L, MnS04 3,2 mg/L, ZnS04, 7 H20 2,8 mg/L, CoCI2 10 4,0 mg/L, FeS04, 7 H20 10 mg/L, Corn Steep 1 ,2 g/L, anti-mousse 0,5 mL/L.
Une préculture liquide de la souche de Trichoderma reesei CL847 est réalisée. Le milieu minéral de la préculture, est identique à celui du réacteur mis à part l'addition de phtalate de potassium à 5 g/L pour tamponner le pH. La croissance du champignon en préculture est faite en utilisant le glucose comme substrat carboné, à la concentration de 30 g.L-1. La croissance de l'inoculum dure de 2 à 3 jours et est effectuée à 28 °C dans un incubateur agité à pression atmosphérique.
Le réacteur contenant le milieu minéral est stérilisé à 120 °C pendant 20 minutes, la source carbonée glucose est stérilisée à part à 120°C pendant 20 minutes puis ajoutée stérilement dans le réacteur de façon à avoir une concentration finale de 30 g/L. Le réacteur est ensemencé à 10% (v/v) avec ladite préculture liquide de la souche de Trichoderma reesei CL847 dès que la concentration résiduelle en glucose dans la préculture est inférieure à 15 g/L.
L'expérience effectuée en bioréacteur comporte deux phases :
- Une phase de croissance sur substrat carboné glucose (concentration initiale = 30 g/L) à une température de 27 °C et un pH de 4,8 (régulé par de l'ammoniaque 5,5 M). L'aération est de 0,5 vvm et l'agitation est augmentée entre 200 et 800 rpm en fonction de la p02 (pression en oxygène dissous), qui est régulée à 30 %.
-Une phase de production de protéines en mode "fed batch". Après 30 heure, une solution de substrat carboné lactose à 250 g.L-1 est injectée en continu au débit de 4 mL/h soit à 35 mg de lactose par g de souche de Trichoderma reesei CL847 et par heure jusqu'à 167 heures. La température est baissée à 25 °C et le pH à 4 jusqu'à la fin de la culture. Le pH est régulé par addition d'une solution d'ammoniaque à 5,5 N qui apporte l'azote nécessaire à la synthèse des cellulases et hémicellulases excrétées. La teneur en oxygène dissous est maintenue à 30 % par action de l'agitation
La production de cellulases est suivie par le dosage des protéines extracellulaires par la méthode de Lowry et standard BSA, après séparation du mycélium par filtration ou centrifugation. Les activités cellulolytiques déterminées sont:
- L'activité papier filtre (UPF : unité papier filtre) qui permet de doser l'activité globale du pool enzymatique endoglucanases et exoglucanases
- L'activité β-glucosidase pour les activités spécifiques.
L'activité UPF est mesurée sur papier Whatman n°1 selon la procédure recommandée par la commission biotechnologique IUPAC, à la concentration initiale de 50 g.L"1 ; on détermine la prise d'essai de la solution enzymatique à analyser qui libère l'équivalent de 2 g.l"1 de glucose (dosage colorimétrique) en 60 minutes. Le principe de l'activité papier filtre est de déterminer par dosage à l'acide dinitrosalicylique (DNS) la quantité de sucres réduits issue d'un papier Whatman N°1. Le substrat utilisé pour déterminer l'activité β-glucosidase est le p-nitrophenyl^-D- glucopyranoside (PNPG). Il est clivé par la β-glucosidase qui libère le p-nitrophenol. Une unité d'activité β-glucosidase est définie comme la quantité d'enzyme nécessaire pour produire 1 pmol de nitrophenol à partir de PNPG par minute et est exprimée en lU/ml.
Les activités spécifiques sont obtenues en divisant les activités exprimées en lU/mL par la concentration en cellulases. Elles sont exprimées en lU.mg"1.
La productivité finale est calculée en tenant compte de toute la masse des cellulases et hémicellulases produites durant la phase de production (incluant les prélèvements) et en la divisant par la durée de la phase de production et le volume utile du réacteur.
Le terme "Biomasse" caractérise la souche de Trichoderma reesei CL847.
Le terme "Protéine" est défini comme étant le cocktail enzymatique obtenu comprenant les cellulases et hémicellulases produites.
Les déterminations analytiques sur le moût final de l'exemple 1 donnent les résultats suivants :
Biomasse g/l : 14,4 Protéines g/l : 35,7
Productivité = 0,21 g/L/h
UPF 22.1 IU/mL
β-Glucosidase spécifique : 0,8 IU/mg
Exemple 2: non conforme
L'exemple 2 présente une culture analogue à l'exemple 1 sauf que le mode "fed- batch" est poursuivi au delà de 200h avec le même substrat d'alimentation. On constate qu'il y a un arrêt de la production de cellulases et hémicellulases après 200 h. Celles-ci commencent même à se dégrader puisque la concentration baisse de 37 g/L à 35 g/L. La biomasse augmente quant à elle durant cette période jusqu'à atteindre une concentration de 20,9 g/L. Les dosages montrent qu'il y a eu une carence en soufre.
L'évolution de la concentration en biomasse et en protéines (g/L) est représentée sur la figure 1.
Les déterminations analytiques sur le moût final donnent les résultats suivants :
Biomasse g/L : 20,9
Protéines g/L : 35,1
Productivité = 0,13 g/L/h (Elle était de 0,17 g/L/h après 216 h)
UPF 16, 1 IU/mL
β-Glucosidase spécifique 0,7 lU/mg
Exemple 3: conforme à l'invention.
L'exemple 3 est lancé dans les mêmes conditions que l'exemple 1 mais comporte 3 phases:
- Une phase a) en mode "batch" dans les mêmes conditions que l'exemple 1 mais avec une concentration en glucose de 60 g/L. Cette phase dure 50h,
- Une deuxième phase a') en mode "fed-batch". Le fedbatch est lancé au moment de l'épuisement du substrat carboné glucose avec une solution d'hydrolysat hémicellulosique issue d'une paille prétraitée par explosion à la vapeur avec imprégnation préalable de H2SO4 dans laquelle a été dissout du glucose et du lactose pour arriver à une concentration globale en substrat carboné de 500g/L. Cette solution n'est pas stérilisée et son pH n'est pas remonté et est de 1. Un débit de 4 mL/h (soit un flux de 35 mg de sucres par g de souche de Trichoderma reesei CL847 et par heure) est appliqué. Cette phase dure 100h.
- une phase b) de production continue de cellulases et hémicellulases est lancée par la suite. Le débit d'alimentation est maintenu constant à 4 mL/h durant toute l'expérience. Le réacteur est maintenu à un poids constant en soutirant continuellement le moût grâce à un système de régulation et à une pompe de soutirage commandable. Le taux de dilution est de 0,002 h-1.
Nous avons produit en continu à partir de 400h une solution enzymatique ayant une concentration supérieure à 100 g/L et avec une productivité supérieure à 0,2 g/L/h. Ceci permet donc de tripler la concentration en protéines et d'avoir une productivité supérieure à celle de l'exemple 1 (+20%) .
L'évolution de la concentration en biomasse et en protéines (g/L) au cours du temps pour l'exemple 3 dans lequel la phase continue est lancée après 150 h avec un débit de 4 mL/h est représentée sur la figure 2.
Les déterminations analytiques sur le moût final donnent les résultats suivants :
Biomasse g/L : 36,7
Protéines g/L : 107,2
Productivité finale = 0,26 g/L/h
UPF 76,8 lU/mL
β-Glucosidase spécifique ,2 lU/mg Exemple 4 : conforme
L'exemple 4 est analogue à l'exemple 3 sauf que la phase b) continue de production est lancée directement après la phase a) de croissance en mode "batch" et que le débit d'alimentation en substrat carboné inducteur dans la phase b) continue de production est augmenté graduellement de 4mL/h à 8 mL/h, c'est-à-dire augmenté de 1 mL toutes les 12 h après le lancement ladite phase b). Le substrat carboné inducteur utilisé est le même que celui de l'exemple 3, c'est-à-dire une solution d'hydrolysat hémicellulosique issue d'une paille prétraitée par explosion à la vapeur avec imprégnation préalable de H2SO4 dans laquelle a été dissout du glucose et du lactose. Cette solution n'est pas stérilisée et son pH n'est pas remonté et est de 1. Les conditions opératoires utilisées dans les phases a) et b) sont identiques à celles utilisées dans l'exemple 3. À l'issue de l'augmentation du débit d'alimentation en substrat carboné inducteur, le taux de dilution est de 0,004 h"1. La masse du volume réactionnel est maintenue constante.
La productivité finale de l'expérience est de 0,39 g.L"1.h"1. Elle est presque doublée par rapport à l'exemple 1. Cela permet de réduire les coûts d'investissements. La concentration finale en protéines est presque triplée. Ce qui permet de réduire les coûts de post-traitement notamment, le cas échéant, la concentration des protéines produites. La culture ne nécessite pas un ki.a élevé (environ 75 h'1) grâce au faible taux de dilution appliqué permettant ainsi d'avoir des faibles coûts opératoires liés à l'agitation et l'aération.
L'évolution de la productivité (rp) en cellulases et des concentrations en souches de T.reesei et en cellulases pour l'exemple 4 dans lequel la phase continue est lancée après 150h et le débit de fed-batch est augmenté de 4 à 8mL/h est représenté sur la figure 3. Les déterminations analytiques sur le moût final donnent les résultats suivants
Biomasse g/L : 58,1
Protéines g/L : 102,9
Productivité finale = 0,39 g/L/h
UPF 77,6 lU/mL
β-Glucosidase spécifique : 1 ,3 lU/mg
La productivité est presque doublée par rapport à l'exemple 1 et la concentration en protéines presque triplée. Ladite concentration est maintenue pendant plus de 300h
Exemple 5 : non conforme
L'exemple 5 permet de montrer l'effet de la non stérilisation de la solution d'hydrolysat hémicellulosique issue d'une paille prétraitée par explosion à la vapeur avec imprégnation préalable de H2SO4 sur les performances du procédé.
L'exemple 5 est lancé dans les mêmes conditions que l'exemple 4 sauf que la solution d'hydrolysat est stérilisée avant utilisation. La concentration de ladite solution est de 250 g/L. La culture aboutit à une forte accumulation de la souche de T. reesei et à une faible production de cellulases. La demande en oxygène est très importante en fin de culture avec un ki_a nécessaire supérieur à 70h"1. Le rendement de production de protéine par rapport au substrat carboné est inférieur à 0,1 g/g alors qu'il est de 0,3 g/g pour les exemples 1 à 4. Les déterminations analytiques sur le moût final donnent les résultats suivants Biomasse : g/L : 99,8
Protéines : g/L : 24,2
UPF : 14,5 IU/mL
β-Glucosidase spécifique : 1 ,1 lU/mg
Exemple 6: non-conforme
L'Exemple 6 montre l'inconvénient de la mise en œuvre de phase continue à fort taux de dilution qui conduisent à un milieu visqueux et à des problèmes de bouchage de la pompe de soutirage à cause de la morphologie du champignon lorsqu'il est en phase de croissance. Le ki_a et donc le coût opératoire lié à l'agitation et l'aération du milieu est élevé.
L'exemple 6 est conduit dans les mêmes conditions que l'exemple 4 avec une première phase a) de croissance en mode "batch" qui dure 50 h et une phase b) continue de production de cellulases et hémicellulases. La solution qui aliment la phase de production est une solution d'hydrolysat hémicellulosique qui n'est pas stérilisée dans laquelle on dissout du lactose à 250 g/L. Le débit d'alimentation en substrat carboné inducteur est de 13 ml/h ce qui correspond à 54 mg de sucres par g de souche de Trichoderma reesei CL847 et par heure. La masse du volume réactionnel est maintenue constante et le taux de dilution appliqué est de 0,025 h"1. La conduite de l'expérience a été très difficile avec un bouchage répétitif de la pompe de soutirage, le milieu étant très visqueux lorsque le champignon est en croissance. Il y a eu une forte production de champignon et la consigne de p02 n'a pas pu être maintenue au dessus de 0%. L'état stationnaire n'a pas pu être atteint. Le kLa du bioréacteur n'était pas suffisant pour amener l'oxygène nécessaire permettant de consommer tout le flux de sucre de l'alimentation. Des kLa de 700 h"1 ont pourtant été mesurés sur eau avec ce réacteur. Exemple 7: non-conforme
L'exemple 7 est conduit dans les mêmes conditions que l'exemple 3 à la différence près que la phase en mode "batch" est réalisée avec une concentration en glucose de 65 g/L. La phase a') en mode "fed-batch" et la phase b) de production en mode continu sont réalisées dans les mêmes conditions à la différence près que la solution qui alimente les phases a') et b) est une solution de lactose à 250 g/L acidifiée par ajout d'acide sulfurique H2SO4 de sorte que ladite solution ait un pH de 1 ,5. Les évolutions des concentrations en biomasse cellulaire et en protéines sont présentées sur la figure 4. Sont également représentées sur la figure 4 l'évolution des concentrations en sulfates et en ions ammonium qui sont non limitant. L'expérience ne permet pas d'obtenir une concentration en protéines supérieure à 50 g/L. La concentration en protéines se stabilise à 50 g/L après 400 heures.
Les résultats obtenus montrent l'importance de l'utilisation d'une solution d'hydrolysats hémicellulosiques dans la phase continu de production et que les performances obtenues ne sont pas dues à la levée de la carence en soufre et azote.
Les déterminations analytiques sur le moût final donnent les résultats suivants :
Biomasse : g/L : 23
Protéines : g/L :48,3
UPF : 31,2
β-Glucosidase spécifique : 1 , 1
Exemple 8: non-conforme
L'exemple 8 est conduit dans les mêmes conditions que l'exemple 3 à la différence près que la solution d'hydrolysat hémicellulosique issue d'une paille prétraitée par explosion à la vapeur avec imprégnation préalable de H2SO4 dans laquelle a été dissout du glucose et du lactose n'est pas stérilisée mais subit une rectification de son pH par ajout de NaOH. Son pH est remonté à 4.
La production de protéines s'arrête après 160 h et reste stable à une concentration proche de 20 g/L.
Les déterminations analytiques sur le moût final donnent les résultats suivants :
Biomasse : g/L : 25,1
Protéines : g/L : 19,8
UPF : 15,8 lU/mL
β-Glucosidase spécifique : 1 ,2 lU/mg

Claims

REVENDICATIONS
1. Procédé de production de cellulases et hémicellulases par une souche appartenant à un champignon filamenteux, en bioréacteur agité et aéré comprenant au moins deux phases :
- une phase a) de croissance de ladite souche en présence d'au moins un substrat carboné de croissance en réacteur fermé, ladite phase de croissance étant réalisée avec une concentration en substrat carboné de croissance comprise entre 10 et 90 g/L - une phase b) continue de production de cellulases dans laquelle au moins un substrat carboné inducteur est alimenté à un débit d'alimentation au moins constant pendant une durée au moins supérieure à 200h, ledit substrat carboné inducteur étant au moins une solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique issu d'un prétraitement acide d'un substrat lignocellulosique, ladite solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique ne subissant pas de stérilisation préalable et pas de rectification de pH, ledit pH de la solution aqueuse étant compris entre 0,5 et 3, la masse du volume réactionnel étant maintenu constant par soutirage d'une fraction dudit volume réactionnel, ladite phase b) opérant à un taux de dilution compris entre 0,002 et 0,008h-1 .
2. Procédé selon la revendication 1 dans lequel ladite souche est une souche de Trichoderma reesei modifiée par mutation, sélection ou recombinaison génétique.
3. Procédé selon l'une des revendications 1 ou 2 dans lequel le substrat carboné de croissance utilisé dans ladite phase de croissance est choisi le glucose, le lactose, le xylose, les résidus obtenus après fermentation éthanolique des sucres monomères des hydrolysats enzymatiques de substrat lignocellulosique et les extraits de la fraction hémicellulosique sous forme de monomères provenant de substrat lignocellulosique prétraité, utilisé seul ou en mélange.
4. Procédé selon l'une des revendications 1 à 3 dans lequel le prétraitement acide est une hydrolyse acide, une cuisson acide ou une explosion à la vapeur avec imprégnation préalable dudit substrat lignocellulosique avec une solution aqueuse d'acide sulfurique.
5. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4 dans lequel le substrat carboné inducteur utilisé dans la phase b) est une solution aqueuse d'hydrolysat hémicellulosique issu d'un prétraitement acide d'un substrat lignocellulosique en mélange avec au moins un autre substrat carboné choisi parmi des sucres inducteurs ou non inducteurs.
6. Procédé selon l'une des revendications 1 à 5 dans lequel la durée de la phase b) continue de production de cellulases est au moins supérieure à 300h.
7. Procédé selon la revendication 6 dans lequel la durée de la phase b) continue de production de cellulases est au moins supérieure à 400h.
8. Procédé selon l'une des revendications 1 à 7 dans lequel le débit d'alimentation dudit substrat carboné inducteur est compris entre 35 et 140 mg de substrat carboné inducteur par gramme en poids sec de souche et par heure.
9. Procédé selon l'une des revendications 1 à 8 dans lequel le débit d'alimentation est graduellement augmenté dans la phase b).
10. Procédé selon l'une des revendications 1 à 9 dans lequel une phase optionnelle a') de croissance et de production réalisée dans un réacteur à alimentation continue d'au moins un substrat carboné inducteur, au cours de laquelle aucun soutirage du contenu du fermenteur n'est effectué, est mise en œuvre entre la phase a) et la phase b).
11. Procédé selon la revendication 10 dans lequel ledit substrat carboné inducteur utilisé dans la phase a') est identique au substrat carboné inducteur utilisé dans la phase b) de production.
12. Procédé selon l'une des revendications 10 ou 11 dans lequel la phase a') est mise en œuvre pendant une durée comprise entre 50 et 150 h.
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DK12775738.3T DK2766471T3 (da) 2011-10-14 2012-09-26 Fremgangsmåde til kontinuerlig produktion af cellulaser ud fra en filamentøs svamp under anvendelse af et carbonholdigt substrat opnået ved sur forbehandling
AU2012322594A AU2012322594B2 (en) 2011-10-14 2012-09-26 Method for the continuous production of cellulases by a filamentous fungus using a carbon substrate obtained from an acid pretreatment
CN201280050395.5A CN104024399B (zh) 2011-10-14 2012-09-26 使用从酸预处理获得的碳底物由丝状真菌连续生产纤维素酶的方法
ES12775738.3T ES2641254T3 (es) 2011-10-14 2012-09-26 Procedimiento de producción continúa de celulasas por un hongo filamentoso utilizando un sustrato carbonado obtenido de un pretratamiento ácido
PL12775738T PL2766471T3 (pl) 2011-10-14 2012-09-26 Sposób wytwarzania celulaz w sposób ciągły przez grzyba nitkowatego z zastosowaniem substratu węglowego pochodzącego ze wstępnej obróbki kwasem
BR112014008847-0A BR112014008847B1 (pt) 2011-10-14 2012-09-26 processo de produção de celulases em contínuo por um cogumelo filamentoso utilizando um substrato carbonado oriundo de um pré-tratamento ácido
EP12775738.3A EP2766471B1 (fr) 2011-10-14 2012-09-26 Procede de production de cellulases en continu par un champignon filamenteux utilisant un substrat carbone issu d'un pretraitement acide
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CA2850609A CA2850609C (fr) 2011-10-14 2012-09-26 Procede de production de cellulases en continu par un champignon filamenteux utilisant un substrat carbone issu d'un pretraitement acide
US14/350,827 US9249402B2 (en) 2011-10-14 2012-09-26 Process for the continuous production of cellulases by a filamentous fungus using a carbon substrate obtained from an acid pretreatment
NO12775738A NO2766471T3 (fr) 2011-10-14 2012-09-26
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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2017174378A1 (fr) * 2016-04-08 2017-10-12 IFP Energies Nouvelles Procede de production de cellulases avec du marc lignocellulosique pretraite
WO2020052952A1 (fr) * 2018-09-14 2020-03-19 IFP Energies Nouvelles Procédé de production de cellulases par un champignon filamenteux

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2991997B1 (fr) 2012-06-18 2015-08-21 IFP Energies Nouvelles Procede de production d'un cocktail enzymatique utilisant les residus liquides d'un procede de conversion biochimique de materiaux ligno-cellulosiques
FR3088934A1 (fr) * 2018-11-26 2020-05-29 IFP Energies Nouvelles Procede de production d’enzymes par une souche appartenant a un champignon filamenteux
US11242549B2 (en) 2019-04-17 2022-02-08 Indian Oil Corporation Limited Bio-refinery waste utilization for enzyme production using novel penicillium funiculosum MRJ-16 fungal strain

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4275167A (en) 1980-06-18 1981-06-23 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Preferential degradation of lignin in gramineous materials
WO2009026716A1 (fr) * 2007-08-30 2009-03-05 Iogen Energy Corporation Procédé de production de cellulase
FR2881753B1 (fr) 2005-02-09 2009-10-02 Inst Francais Du Petrole Procede de production d'enzymes cellulolytiques et hemicellulolytiques utilisant les residus de distillation de fermentation ethanolique d'hydrolysats enzymatiques de materiaux (ligno-)cellulosique
WO2012007650A1 (fr) * 2010-07-12 2012-01-19 IFP Energies Nouvelles Procédé de production d'enzymes cellulolytiques et/ou hémicellulolytiques amélioré

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1036792A (zh) * 1988-09-23 1989-11-01 山东大学 高活性纤维素酶的制造方法
CN1063895A (zh) * 1991-02-04 1992-08-26 无锡轻工业学院 纤维素酶生产及其应用技术

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4275167A (en) 1980-06-18 1981-06-23 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Preferential degradation of lignin in gramineous materials
FR2881753B1 (fr) 2005-02-09 2009-10-02 Inst Francais Du Petrole Procede de production d'enzymes cellulolytiques et hemicellulolytiques utilisant les residus de distillation de fermentation ethanolique d'hydrolysats enzymatiques de materiaux (ligno-)cellulosique
WO2009026716A1 (fr) * 2007-08-30 2009-03-05 Iogen Energy Corporation Procédé de production de cellulase
WO2012007650A1 (fr) * 2010-07-12 2012-01-19 IFP Energies Nouvelles Procédé de production d'enzymes cellulolytiques et/ou hémicellulolytiques amélioré

Non-Patent Citations (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ALLEN, A.L.; ANDREOTTI, R.E., BIOTECHNOL- BIOENGI, vol. 12, 1982, pages 451 - 459
CHAUDHURI B K ET AL: "Comparison of growth and maintenance parameters for cellulase biosynthesis by Trichoderma reesei-C5 with some published data", ENZYME AND MICROBIAL TECHNOLOGY, STONEHAM, MA, US, vol. 16, no. 12, 1 December 1994 (1994-12-01), pages 1079 - 1083, XP023679737, ISSN: 0141-0229, [retrieved on 19941201], DOI: 10.1016/0141-0229(94)90146-5 *
DURAND ET AL.: "Génétique des microorganismes industriels", 1984, article "Proc. Colloque SFM", pages: 39 - 50
HENDY N A ET AL: "Enhanced cellulase production in fed-batch culture of Trichoderma reesei C30", ENZYME AND MICROBIAL TECHNOLOGY, STONEHAM, MA, US, vol. 6, no. 2, 1 February 1984 (1984-02-01), pages 73 - 77, XP023678270, ISSN: 0141-0229, [retrieved on 19840201], DOI: 10.1016/0141-0229(84)90038-3 *
ILMÉN ET AL., APPL.ENVIRON. MICROBIOL., vol. 63, 1997, pages 1298 - 1306
INGRID PERSSON ET AL: "Fungal cellulolytic enzyme production: A review", PROCESS BIOCHEMISTRY, vol. 26, no. 2, 1 April 1991 (1991-04-01), pages 65 - 74, XP055032619, ISSN: 1359-5113, DOI: 10.1016/0032-9592(91)80019-L *
JU ET AL: "Wastepaper hydrolysate as soluble inducing substrate for cellulase production in continuous culture of Trichoderma reesei", BIOTECHNOLOGY PROGRESS, AMERICAN INSTITUTE OF CHEMICAL ENGINEERS, US, vol. 15, 1 January 1999 (1999-01-01), pages 91 - 97, XP008148771, ISSN: 8756-7938, DOI: 10.1021/BP980116N *
LO C M ET AL: "Cellulase production by continuous culture of Trichoderma reesei Rut C30 using acid hydrolysate prepared to retain more oligosaccharides for induction", BIORESOURCE TECHNOLOGY, ELSEVIER BV, GB, vol. 101, no. 2, 1 January 2010 (2010-01-01), pages 717 - 723, XP026662968, ISSN: 0960-8524, [retrieved on 20090922], DOI: 10.1016/J.BIORTECH.2009.08.056 *
MONTENECOURT, B.S.; EVELEIGH, D.E., APPL. ENVIRON. MICROBIOL., vol. 34, 1977, pages 777 - 782
RYU D ET AL: "STUDIES ON QUANTITATIVE PHYSIOLOGY OF TRICHODERMA-REESEI WITH 2 STAGE CONTINUOUS CULTURE FOR CELLULASE PRODUCTION", BIOTECHNOLOGY AND BIOENGINEERING, vol. 21, no. 11, 1979, pages 1887 - 1904, XP055032623, ISSN: 0006-3592 *
SCHAFNER D W ET AL: "CELLULASE PRODUCTION IN CONTINUOUS CULTURE BY TRICHODERMA-REESEI ON XYLOSE-BASED MEDIA", BIOTECHNOLOGY AND BIOENGINEERING, WILEY & SONS, HOBOKEN, NJ, US, vol. 39, no. 8, 1 January 1992 (1992-01-01), pages 865 - 869, XP002628529, ISSN: 0006-3592, DOI: 10.1002/BIT.260390808 *
T. M. PAKULA: "The effect of specific growth rate on protein synthesis and secretion in the filamentous fungus Trichoderma reesei", MICROBIOLOGY, vol. 151, no. 1, 1 January 2005 (2005-01-01), pages 135 - 143, XP055032610, ISSN: 1350-0872, DOI: 10.1099/mic.0.27458-0 *
XIONG H ET AL: "Xylanase production by Trichoderma reesei Rut C-30 grown on L-arabinose-rich plant hydrolysates", BIORESOURCE TECHNOLOGY, ELSEVIER BV, GB, vol. 96, no. 7, 1 May 2005 (2005-05-01), pages 753 - 759, XP025313240, ISSN: 0960-8524, [retrieved on 20050501], DOI: 10.1016/J.BIORTECH.2004.08.007 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2017174378A1 (fr) * 2016-04-08 2017-10-12 IFP Energies Nouvelles Procede de production de cellulases avec du marc lignocellulosique pretraite
FR3049957A1 (fr) * 2016-04-08 2017-10-13 Ifp Energies Now Procede de production de cellulases avec du marc lignocellulosique pretraite
CN109072210A (zh) * 2016-04-08 2018-12-21 Ifp 新能源公司 用预处理的木质纤维素渣料制备纤维素的方法
US10822600B2 (en) 2016-04-08 2020-11-03 IFP Energies Nouvelles Method for producing cellulases with pretreated lignocellulosic pomace
WO2020052952A1 (fr) * 2018-09-14 2020-03-19 IFP Energies Nouvelles Procédé de production de cellulases par un champignon filamenteux
FR3085961A1 (fr) * 2018-09-14 2020-03-20 IFP Energies Nouvelles Procede de production de cellulases par un champignon filamenteux

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Publication number Publication date
CA2850609C (fr) 2019-12-31
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US20140295524A1 (en) 2014-10-02
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